MSC細胞準備工作
(1)試管、試管架、滴管、吸管、小鼠固定架、玻璃瓶、玻璃皿、燒杯、橡皮頭、剪刀、鑷子、紗布、棉球、酒精燈、滴管、移液器、細胞計數(shù)器、生理鹽水、PBS、雙抗(青鏈霉素)、75%酒精、95%酒精、培養(yǎng)瓶(50ml,260ml)。
(2)BALB/C小鼠(4~5周齡,18~22g,雌雄不限)、胎牛血清(滅活)、DMEM-LG培養(yǎng)液(美國GIBCO)
(3)針頭與注射器:4.5號、7號針頭(沖小鼠股骨、脛骨和肱骨骨髓,制單細胞懸液)。
MSC細胞實驗前準備
(1)實驗室消毒,隔離衣消毒,小鼠固定架消毒。配10%FBS培養(yǎng)液,加雙抗(內(nèi)含青霉素、鏈霉素各100μg/ml)。
(2)用75% 酒精擦拭無菌操作臺面,取各種已消毒的培養(yǎng)用品置于超凈臺面,無菌室及超凈臺用紫外燈照射30~60 分鐘滅菌。
(3)開始工作前先洗手、75%酒精擦拭手至肘部。穿隔離衣,戴手套。用70% 酒精擦拭無菌操作臺面,并開啟無菌操作臺風(fēng)機運轉(zhuǎn)10 分鐘后,才可開始實驗操作。點燃酒精燈,安裝吸管帽。
MSC細胞實驗步驟
(1)BALB/C純系小鼠脫臼處死后,75%乙醇浸泡5min后,在無菌操作臺上無菌條件下分離雙側(cè)股骨及脛骨,在含生理鹽水的50mm2玻璃平皿中去除股骨周圍肌肉組織,剪去包括骺板在內(nèi)的兩側(cè)骺端,用10ml注射器(配4.5號針頭)抽取適量含10%FBS的完全培養(yǎng)基沖洗骨髓腔,將骨髓沖入培養(yǎng)瓶。依次用7號針頭和4.5號針頭(或依次過21、23、25號)反復(fù)吹打骨髓細胞懸液,制成單細胞懸液。細胞懸液在1000rpm離心5min后收集細胞或進行密度梯度離心。
(2)將單細胞懸液于1:2比例加到含1.082比重Percoll細胞分離液的離心管中,4℃條件下,經(jīng)500g密度梯度離心25min,小心收集離心液界面上乳白色云霧狀的單核細胞層,加入等量無血清培養(yǎng)基或磷酸鹽緩沖液(PBS)充分洗滌(500g離心5min或180g離心10min)2次,去上清,用10%FBS的培養(yǎng)基懸浮細胞(用0.83%氯化胺破碎紅細胞,培養(yǎng)液重懸細胞)。注意:密度梯度離心力500g×30min組優(yōu)于800g×30min。本步驟可以省略。
附:人骨髓:抽取骨髓10-15ml(或正常人手術(shù)肋骨取骨髓3-5ml),每毫升骨髓加100u 肝素抗凝,充分混勻后,保存于4℃冰箱,24小時內(nèi)分離骨髓MNC。骨髓先加入等量 PBS或Hanks液(或培養(yǎng)液)混勻后,以1份淋巴細胞分離液上面加2份稀釋骨髓的比例,將稀釋骨髓緩慢加入ficoll液面上(密度1.077),水平離心機20℃條件下500g(2000r/min)離心25~30分鐘。從界面上取出的MNC用PBS液洗滌2~3次后,加適量培養(yǎng)液計數(shù)。
(3)數(shù)細胞數(shù)量,達到106~107/ml后即進行原代培養(yǎng),按5×106/ml濃度接種于50ml培養(yǎng)瓶中(1×106/cm2培養(yǎng)瓶),每瓶含5ml L-DMEM完全培養(yǎng)液。在體積分數(shù)為5%的CO2和37℃條件下靜止培養(yǎng),3d后換液去除非貼壁細胞,以后每3~4d半量換液1次,10~12d細胞達90%融合時傳代。
(4)傳代培養(yǎng):傳代時先全部吸出培養(yǎng)液后,用無Ca2+ 、Mg2+PBS液洗滌二次,加入37℃預(yù)熱的0.25%(2.5g/L,0.25%)胰蛋白酶(含1mmol/L EDTA,即用1mmol/L-EDTA-Na2配制)消化1~2分鐘,吸去胰酶,以殘留的胰酶繼續(xù)消化,倒置顯微鏡下觀察,細胞開始皺縮時(細胞開始變圓)加入完全培養(yǎng)液(3ml左右)終止胰酶作用。吸管反復(fù)吹打后將細胞收集于15ml離心管中,1500r/min 離心10分鐘后棄上清,再用PBS液洗滌二次徹底洗去混有的胰蛋白酶。
將細胞再懸浮于培養(yǎng)液中,按2~5×105/ml再次接種傳代于新的培養(yǎng)瓶中。當(dāng)這些細胞生長接近融合層時,即得到骨髓MSC。傳至3~5代的MSC按1×105cells/cm2密度接種于放置有蓋玻片的6孔板內(nèi),以制備細胞爬片。
注:貼壁細胞的消化,應(yīng)掌握各類型細胞不同的消化時間,避免過度消化,損傷細胞活力;或消化不足,不能充分解離成單細胞。如為長期實驗,每個月重新復(fù)蘇一支細胞,避免長期傳代引起細胞特性變異。
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